Влияние этилена на жизнь растений

Влияние этилена на жизнь растений

                                      ВВЕДЕНИЕ

     Газ этилен (С2Н4) справедливо относят к гормонам растений, так как он синтезируется в растениях и в крайне низких концентрациях регулирует их рост, активирует созревание плодов, вызывает старение листьев и цветков, опадение листьев и плодов, участвует в ответе растений на различные стрессовые факторы и в регуляции многих других важных событий в жизни растения [1]. Этилен, точнее, этиленпродуценты - соединения, разрушение которых сопровождается выделением этилена, имеют широкое применение в практике сельского хозяйства. Все это определяет большое внимание биохимиков, физиологов, генетиков, молекулярных биологов и практиков к изучению этилена.

В последние годы большие успехи достигнуты в получении и изучении мутантных растений, нечувствительных к этилену. Эти мутанты обеспечили прогресс в выделении генов, отвечающих за восприятие и передачу этиленового сигнала в растениях, и помогли частично расшифровать молекулярные пути, по которым сигнал проходит, вызывая включение или подавление определенных физиологических программ. Этот успех и побудил автора написать статью об этилене. Ее целью является рассмотрение регуляторной роли этилена в растениях, его практического применения, особенностей его биосинтеза, а также новейших данных о механизме действия этого фитогормона.

ОТКРЫТИЕ ГОРМОНАЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ ЭТИЛЕНА

Участие этилена в регуляции роста растений было открыто Д.Н. Нелюбовым в Санкт- Петербургском университете в 1901 году. Д.Н. Нелюбов установил, что содержащий этилен светильный газ вызывает большие изменения в росте проростков гороха. В крайне малых концентрациях (1 часть на 1600000 частей воздуха) этилен вызывал тройную реакцию стебля этиолированных (выращенных в темноте) проростков гороха: он подавлял рост стебля в длину, вызывал его утолщение и изгиб в горизонтальном направлении.

Несмотря на публикацию этих сведений, мировая научная общественность не обратила внимание на регуляторное действие этилена на рост растений. Этилен был заново открыт в качестве регулятора физиологических процессов у растений в 20-е годы в результате работ Ф. Денни (США) по ускорению созревания плодов под воздействием этилена. В последующем был обнаружен широкий спектр физиологических процессов, регулируемых этиленом, и установлены пути его биосинтеза у растений, то есть доказано, что этилен представляет собой один из гормонов растений (фитогормонов), который в соответствии со свойствами гормонов образуется в растениях и в крайне низких концентрациях регулирует важнейшие программы их жизни. Только в отличие от других гормонов он не поступает из одних органов в другие, выполняя роль дистанционного сигнала. Вместо этилена по растению транспортируется его предшественник, который и участвует в передаче сигнала. Сам же этилен, выделяясь из растения в окружающую атмосферу, может обеспечивать сигнализацию между растениями.

     БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ЭТИЛЕНА

Как показано в опытах д.н. Нелюбова, этилен угнетает рост стебля в длину и вызывает его утолщение. Впоследствии ученые выяснили, что это происходит за счет изменения направления роста клеток стебля, которому соответствует изменение ориентации элементов цитоскелета. Этилен подавляет рост корня, ускоряет старение, что хорошо прослеживается на листьях и цветках растений. Этилен ускоряет также созревание плодов, вызывает опадение листьев и плодов (рис.1.). Он индуцирует образование в черешке специального отделительного слоя клеток, по которому происходит отрыв листа от растения, а на месте отрыва вместо ранки остается индуцированный этиленом защитный слой клеток с опробковевшими стенками. Этот фитогормон влияет на пол цветков, вызывая образование женских цветков у растений, для которых характерны раздельные женские и мужские цветки, например у огурца, тыквы и кабачков.

      Образование корней на стебле и формирование в стебле особой ткани - аэренхимы, по которой кислород поступает в корни, индуцируются этиленом. Это спасает растения в условиях кислородного голодания корней, в которое они попадают при затоплении почвы. Помимо этого этилен вызывает и другие изменения в растениях. Например, эпинастию, изменяющую угол наклона листа по отношению к стеблю (листья опускаются). В ответах растений на различные повреждающие воздействия - механические, химические и биологические - также участвует этилен. Он вовлекается в ответ растений на атаку патогенов. Этилен включает системы защиты растений от патогенов. При этом он индуцирует синтез большого числа ферментов, например ферментов, разрушающих клеточную стенку грибов (хитиназы, специфические глюканазы), а также ферментов, участвующих в синтезе фитоалексинов – соединений, ядовитых для патогенов.

При поранении растений происходят синтез и выделение этилена. Есть данные о том, что при объедании листьев древесных растений животными объеденное растение выделяет этилен и под его воздействием в листьях соседних растений могут синтезироваться вещества, делающие листья невкусными для животных.

                               БИОСИНТЕЗ ЭТИЛЕНА

Ключевым соединением для биосинтеза этилена в растениях является аминокислота метионин. При взаимодействии метионина с макроэргическим соединением АТФ возникает промежуточный продукт S-аденозилметионин, который далее превращается в 1-аминоциклопропан -1- карбоновую кислоту (АЦК) - непосредственный предшественник этилена в растениях. Затем АЦК в присутствии кислорода разлагается с образованием этилена, аммиака, муравьиной кислоты и С02 (рис. 2). Каждый этап катализируется определенным ферментом. Ключевым ферментом, на уровне которого регулируется биосинтез этилена, является АЦК-синтаза. АЦК-синтаза не синтезируется в клетках постоянно, а индуцируется индукторами - веществами, вызывающими ее синтез. Такие ферменты принято называть Индуцебельными. Синтез АЦК-синтазы индуцируют высокие концентрации ауксина, молекулы - химические сигналы грибной инфекции, а также сам этилен. Синтез АЦК - синтазы идет до тех пор, пока присутствует индуктор. Затем синтез прекращается, а образованные молекулы фермента быстро разрушаются, так как период их полураспада составляет 20-30 мин. Это подчеркивает, как жестко растение контролирует синтез этилена на уровне образования и разрушения ключевого фермента биосинтеза АЦК - синтазы.

Существенно, что в геноме растений существует большое семейство генов АЦК - синтазы, которые различаются по своей регуляции: одни включаются на разных стадиях нормального развития растений, другие - при поранении, третьи - при действии патогена и т.д. Это обеспечивает многофакторную систему регуляции синтеза этилена в растениях. Гены АЦК-синтазы и АЦК-оксидазы привлекают большое внимание генных инженеров, так как модификация растений по этим генам позволяет регулировать синтез этилена и, следовательно, регулировать скорость созревания плодов. На этом луге американские генные инженеры получили трансгенные растения томатов с увеличенным на месяц сроком хранения плодов.

Следующий этап биосинтеза этилена сводится к окислению АЦК. Он кислородозависим и не протекает в условиях кислородного голодания (анаэробиоза). Такая ситуация возникает в корнях при затоплении почвы. Без кислорода подавляются дыхание корня, синтез АТФ и зависящие от нее процессы. Нарушается снабжение побегов водой, элементами минерального питания, гормонами (цитокининами) и другими продуктами жизнедеятельности корня. Все это грозит гибелью растений. И тут включается этиленовая система защиты. В условиях анаэробиоза превращение в корнях АЦК в этилен прекращается. АЦК поступает в составе пасоки раствора, поступающего из корней в побеги, в надземные органы, где нет недостатка 02 и превращается там в этилен. Этилен индуцирует в побегах эпинастию - изменение угла наклона черешка к стеблю, в результате которого листья опускаются вниз, уходят от прямого действия солнечных лучей (см. рис. 1). При этом листья меньше нагреваются и меньше испаряют воды. Этилен индуцирует образование на стеблях корней, которые не выполняют поглощающей функции, но осуществляют специфические синтетические процессы, необходимые для нормального функционирования побега, в том числе восстанавливают снабжение надземных органов цитокининами. Кроме того, этилен индуцирует образование в стебле аэренхимы - ткани, по которой 02 попадает из стеблей в корни и обеспечивает их нормальную жизнедеятельность. Этот пример хорошо иллюстрирует, как этилен обеспечивает адаптацию растений к условиям кислородной недостаточности в зоне корней, возникающей при затоплении почвы.

При нормальном протекании жизни растений этилен активно синтезируется в созревающих плодах и стареющих листьях. Это понятно: он индуцирует созревание плодов, старение и опадение листьев. Однако высокий уровень синтеза этилена характерен также для меристематических тканей - зон клеточного деления. Это пока трудно объяснить. Синтез этилена в растениях вызывают высокие концентрации ауксина, что происходит на уровне индукции генов АЦК-синтазы. Синтезированный этилен подавляет реакции, вызываемые ауксином. Например, в определенном диапазоне концентраций ауксин активирует рост корня. Их превышение индуцирует синтез этилена, который подавляет рост корня. Таким образом, этилен включается в контроль растением действия ауксина по принципу обратной связи. Этилен выполняет такую же роль и в реакциях растений на высокие концентрации цитокининов.

                    ПРАКТИЧЕСКОЕ ПРИМЕНЕНИЕ ЭТИЛЕНА

Этилен находит широкое использование в сельском хозяйстве. Применяют не непосредственно этилен, а так называемые этилен-продуценты, которые разлагаясь образуют этилен. Наиболее распространен среди них этефон - 2-хлорэтилфосфоновая кислота:

С1СН2СН2РО(ОН)2 - СН2=СН2 + НС1 + НЗРО4

Этефон применяют для ускорения созревания и облегчения уборки томатов, для их послеуборочного дозревания (дозаривания), что особенно важно в условиях короткого лета. Обработка этефоном облегчает механизированную уборку яблок, вишен, цитрусовых, облепихи, винограда. На плантациях каучуконосов этефон усиливает отделение латекса у каучуконосных деревьев гевеи, ускоряет выделение живицы у сосны. Его применяют для борьбы с полеганием посевов ржи и ячменя. Этефон способствует формированию укороченного толстого стебля, не полегающего под тяжестью колоса. Его применяют при выращивании огурцов для консервирования. Этефон подавляет развитие мужских цветков и стимулирует формирование женских цветков с последующим партенокарпическим (без оплодотворения) развитием плодов. Этефон используют для опадения листьев хлопчатника перед машинной уборкой коробочек, применяют для регуляции зацветания ананасов и на многих других культурах.

АРАБИДОПСИС - РАСТЕНИЕ, ОБЕСПЕЧИВШЕЕ УСПЕХ В ИЗУЧЕНИИ МЕХАНИЗМА ДЕЙСТВИЯ ЭТИЛЕНА

Успех в изучении механизма восприятия и передачи этиленового сигнала был достигнут на растениях Arabldopsis thaliaпa (резушка Таля). Это излюбленный объект генетиков и молекулярных биологов растений, подобно плодовой мушке-дрозофиле у генетиков животных.

Арабидопсис обладает самым маленьким среди изученных растений геномом (совокупность генов данного организма) - всего 120 млн. пар оснований, что составляет 3% от генома человека. Диплоидная клетка содержит всего 5 пар хромосом. В отличие от других растений ДНК арабидопсиса содержит мало нуклеотидных последовательностей, которые не принимают непосредственного участия в кодирова­нии белка. У арабидопсиса сравнительно короткий жизненный цикл - около 6 недель. Он дает очень много мелких семян. Само растение тоже неболь­шое, что позволяет работать с ним в стерильных условиях, выращивая растения в колбах. Все это создает большие преимущества арабидопсиса как модельной системы для изучения генома растений. Правительством США создана специальная про­грамма и выделены фонды для определения нуклеотидной последовательности полного геном  араби­допсиса. Исследование генома арабидопсиса важно потому, что существует много общего в геномах всех 250000 видов растений. Это позволяет выделить ин­тересующий ген из арабидопсиса, а затем, исполь­зуя его в качестве зоила, извлечь соответствующий ему ген из другого растения с более сложной орга­низацией генома.

В настоящее время получено большое число му­тантов арабидопсиса с повреждением единичного гена. Эти мутанты позволяют изучать генетику рос­та и развития, фотосинтеза, ответ растений на внешние воздействия и генетику метаболических це­пей. В частности, в США получены мутанты араби­допсиса, нечувствительные к эппену. Их обработка этиленом не давала типичного ответа проростков на С2Н4 у мутантов в отличие от дикого типа (не му­тантных растений) не происходило подавление рос­та стебля в длину, его утоление и подавление роста корня. Этилен не вызывает у мутантов активации этиленчувствительных генов, например генов хити­назы, не ускорял старения листьев и не вызывал эпинастию. Все это позволяет предполагать, что по­врежден ген рецептора, через который проявляются все реакции растений на этилен. Полученные му­танты позволили перейти к выделению генов вос­приятия и передачи этиленовых сигналов.

ВЫДЕЛЕНИЕ ГЕНА - РЕЦЕПТОРА ЭТИЛЕНА

Исследования, проведенные М. Холлом (Вели­кобритания) и Э. Сислером США), показали, что: 1) клеткам растений присуща способность обрати­мо связывать этилен, 2) ингибирование этого про­цесса приводит к подавлению типичных реакций растений на этилен, 3) этиленсвязывающий белок находится в клеточной мембране. Исследование не­чувствительных к этилену мутантов арабидопсиса подтвердило, что у них резко снижено связывание этилена. Это позволяло ожидать, что у мутантов по­врежден ген рецептора этого гормона. Большой прогресс был достигнут в результате работ несколь­ких групп американских исследователей, включая А. Бликера, Дж. Еккера, Х. Клея.

Один из генов, вызывающих нечувствительность к этилену (etr 1), выделен и клонирован А. Бликером. Затем ген был введен в клетки дрожжей, в которых и осуществлен синтез кодируемого геном etr 1 белка. Этот белок ETR1 придавал клеткам дрожжей спо­собность связывать этилен, которая отсутствовала у контрольных дрожжей. Связывание происходило с той же кинетикой, что в клетках растений, и подав­лялось теми же ингибиторами. Все это позволяло заключить, что в дрожжах синтезирован рецептор этилена. Он представляет собой белок 79 kD, кото­рый образует димер (147 kD), две субъединицы ко­торого соединены дисульфидным мостиком. Уста­новление нуклеотидной последовательности гена etr 1 позволило вывести из нее аминокислотную по­следовательность кодируемого им белка ETR1. Бе­лок проявил высокую гомологию с бактериальной гистидиновой протеинкиназой, входящей в состав бикомпонентной сигнальной системы бактерий. Она называется бикомпонентной потому, что действует в два этапа и включает в себя два белка: сен­сор и эффектор (рис. 3).

Рис. 3. а - бикомпонентная сигнальная система бактерий. Звездочкой помечены фосфорилиро­вание гистидина в составе гистидиновой проте­инкинаэы и пере нос фосфатной группы на остаток аспарагиновой кислоты в молекуле эффектора. Римскими цифрами помечены два этапа переноса сигнала. б - схематическое изображение структу­ры этиленового рецептора ЕТА1 у арабидопсиса: 1 - гидрофобный, этиленсвязывающий домен на N-конце белка; 2 - домен, соответствующий гисти­диновой протеинкиназе, автофосфорилирующей 353 гистидиновый остаток в молекуле; 3 - домен, содержащий остаток аспарагиновой кислоты, на который должен переносится фосфат с гистидина

На первом этапе принятый сенсорной гистидиновой протеинкиназой сигнал возбуждает актив­ность фермента и приводит к фосфорилированию в его молекуле всего одного гистидинового остатка, расположенного в строго определенном участке мо­лекулы, высоко консервативном у всех гистиди­новых протеинкиназ. На втором этапе функцио­нирования бикомпонентной сигнальной системы фосфатная группа передается с гистидинового ос­татка на остаток аспарагиновой кислоты, располо­женной у бактерий обычно в другом белке. В ре­зультате фосфорилирования он активируется и  приобретает способность регулировать активность генов, включая одни из них и выключая другие. Таким путем осуществляется ответ клетки на принятый сигнал. Гистидиновые протеинкиназы, входящие в состав бикомпонентной сигнальной системы, широко распространены у бактерий и участвуют в их реакциях на изменение осмотических условий среды, концентрации в ней необходимых метаболитов, в явлениях хемотаксиса и взаимодействии с хозяином. В эукариотических клетках широко распространены сериновые и треониновые протеинкиназы, которые фосфорилируют у белков определенные сериновые и треониновые остатки, и тирозиновые протеинкиназы, фосфорилирующие тирозиновый остаток. Гистидиновая протеинкиназа считалась специфичной для бактерий, однако она обнаружена также у дрожжей, где участвует в ответе на солевой стресс, и у млекопитающих. Установленная А. Бликером принадлежность ETR1 арабидопсиса к гистидиновым протеинкиназам является первым сообщением об их присутствии у растений. Анализ аминокислотной последовательности ETR1, выведенной из нуклеотидной последовательности его гена, обнаруживает в белке три различные части (см. рис. 3). Одна из них (расположена на N-конце молекулы) отличается высокой гидрофобностью. Она уникальна по своей структуре, не имеет в банке данных аналогов с другими белками. Эта часть молекулы локализована в мембране и ответственна за связывание этилена. Далее в молекуле расположена гистидиновая протеинкиназа, которая должна фосфорилировать 353-й гистидин и далее передавать фосфатную группу на 659-й остаток аспарагиновой кислоты, расположенной ближе к С-концу молекулы. Судя по аминокислотной последовательности, в молекуле этиленового рецептора содержатся и сенсорная и эффекторная части бикомпонентной сигнальной системы бактерий. Кстати, такая ситуация встречается и у бактерий.

Генетические опыты показали, что у арабидоп­сиса за рецепторным белком ETR1 в системе пере­носа этиленового сигнала должен быть расположен белок CTR1, блокирующий в норме прохождение сигнала. Мутация по его гену ctr 1 приводит к морфо­логическим изменениям у арабидопсиса, которые могли бы возникнуть при постоянном включении этиленовой программы. Этот белок репрессирует этиленовые программы у дикого типа. Изучение первичной структуры (аминокислотной последо­вательности) белка CTR1 показало его принад­лежность к семейству широко распространенных у эукариот серин/треониновых протеинкиназ, уча­ствующих в так называемом МАР-киназном каска­де (МАР от англ. mitogen activated protein), в кото­ром последовательно одна киназа фосфорилирует другую и тем самым активирует ее для фосфорили­рования следующей протеинкиназы в цепи переда­чи сигнала на белки хроматина.

Таким образом установлено, что в передаче эти­ленового сигнала в клетках арабидопсиса принима­ют участие сигнальные системы как бактериального (гистидиновая протеинкиназа - ETR1 - рецептор этилена), так и эукариотического типа (репрессор передачи сигнала CTR1, серин\треониновая проте­инкиназа, относящаяся к МАР-киназному каскаду. Необходимы исследования для выяснения конкрет­ного взаимодействия в клетках этих регуляторных систем. Цепочка последующих этапов передачи этиленового сигнала еще не изучена. Она может быть достаточно сложной и включать в себя, напри­мер, так называемые G-белки, что показано в лабо­ратории М. Холла. Эти белки при соединяют к себе GTP (гуанозинтрифосфат) и в результате приобре­тают способность к передаче сигналов от одного белка к другому.

Известно, что в конечном счете этилен включает определенные генетические программы, обеспечи­вающие специфический ответ на него растения. Например, индукция этиленом защитных реакций растений на патоген включает в себя активацию ге­нов  1,3-глюканазы, щелочной хитиназы, PR-­белков, халкон-синтазы и богатых оксипролином гликопротеинов. Этого не происходит у нечувстви­тельных к этилену мутантов. В настоящее время не­сколько этилениндуцируемых генов хорошо изуче­ны и найдены регуляторные элементы (РЭ) в ДНК их промоторов, которые ответственны за включение генов этиленом. Эти РЭ имеют общие нуклеотид­ные последовательности у разных этилензависимых генов. Обнаружены белки, способные узнавать РЭ этилениндуцируемых генов, представляющие со­бой, по-видимому, трансфакторы, взаимодействие которых с РЭ включает гены. В этих белках имеется общая аминокислотная последовательность (59 ами­нокислотных остатков), обеспечивающая их связы­вание с ДНк. Допускают, что эти белки могут быть мишенью для рассмотренного выше сигнального каскада, хотя это еще необходимо доказать. Поэто­му на схеме, суммирующей все приведенные све­дения о возможном механизме действия этилена, стрелки, идущие к трансфакторам, показаны пунк­тиром (рис. 4). В основу представленной схемы по­ложена одна из гипотез. Бликера [4]. Исследования механизма действия этилена развиваются настолько быстро, что нет сомнения в том, что в ближайшее время будет выяснена вся цепь событий от взаимо­действия этилена с его рецептором до включения этилениндуцируемых генетических программ.

Рис. 4. Гипотетическая схема передачи этилено­вого сигнала у растений. ЕТА1 - димерный белок рецептора этилена; СТА - блокатор этиленовой программы, который инактивируется сигналом с ЕТА 1. Пунктиром показана предполагаемая пере­дача сигнала на трансфакторы, которые в резуль­тате этого приобретают способность взаимодей­ствовать с регуляторными элементами этиленза­висимых генов и вследствие этого включать их активность.

Достигнутый на Arabldopsis thaliaпa прогресс в изучении этиленового рецептора и его гена позво­лил выделить соответствующий ген из генома тома­тов и синтезировать в дрожжевой системе закоди­рованный в нем белок со свойствами рецептора этилена (Х. Клей). Этот белок ТАЕ1 организован по тому же принципу, что и ETR1 у арабидопсиса. Кро­ме того, у томатов выделены другие гены, гомологичные  etr 1 арабидопсиса, но имеющие определен­ные отличия от него (Х. Клей). Исследования на арабидопсисе и томатах показали, что, по-видимо­му, рецепторы этилена кодируются мультигенным семейством, отдельные гены которого по-разному экспрессируются в ходе роста и развития растений.

Практическая работа.

Цель работы: изучить воздействие этилена на растение.

Для своей работы я выбрал растение под названием Эхмея полосатая Aechmea fasciata, так как на примере этого растения легко и просто можно доказать действие газа этилена на жизнь растения.

Немного о самом ростении.

Род объединяет около 170 видов, произрастающих в Мексике, Аргентине и Бразилии как эпифиты или наземные растения. Эхмея - широко распространенный вид, типичный представитель бромелиевых. Это почти бесстебельные, среднерослые, травянистые виды, обитатели влажных субтропиков. Длинные жесткие листья собраны в розетку и настолько плотно заходят один за другой, что образуют водонепроницаемый резервуар. В природе вода, скапливающаяся в воронках бромелий, со временем смешивается с различным падающим сверху лесным мусором, растительными и животными остатками. В результате на деревьях образуются подвешенные болотца, в которых поселяются животные и

растения. В естественных условиях и в домашнем садоводстве существует несколько разновидностей. Более красивы искусственно выведенные гибриды. Все виды и формы эхмеи пригодны для комнатного садоводства, поскольку в отличие от большинства других бромелиевых с розетковидными листьями они хорошо переносят сухой воздух и долго цветут.
Корни Эхмеи впитывают воду и питательные вещества из почвы. Рекомендуется в воронку подливать воду. Таким образом для эхмеи можно компенсировать недостаточную влажность воздуха. В течение всего года эхмея должна расти при комнатной температуре, воздух должен быть влажным, а почва - умеренно удобренной. Место выращивания должно быть светлым, но притененным от прямых солнечных лучей. Виды эхмей с мягкими листьями - Эхмея Вайльбаха (Aechmea weilbachii), Эхмея матово-красная (Aechmea miniata) - предпочитают умеренное освещение, остальные нуждаются в интенсивном освещении с притенением в солнечные дни.

Эхмея полосатая Aechmea fasciata - это эпифитное растение с плотной розеткой из листьев, количеством около 20, линейной формы, заостренные на конце, длиной до 1 метра и шириной около 5-8 см, с зубчатым краем. Листья зеленые с широкими серебристыми или белыми поперечными полосами. Цветонос прямой и густоопушенный. Соцветие головчатое с розовыми прицветниками, с колючим краем. Цветки небольшие, сидячие с фиолетово-голубыми лепестками. Цветение начинается в первой половине лета или конце зимы.

 СОВЕТЫ ПО УХОДУ.
Температура: Эхмеи предпочитает умеренные температуры - летом около 20 - 25°С, зимой около 17-18°С, минимум 16°С.
Освещение: Яркий рассеянный свет, можно с некоторым количеством прямого солнца утром или вечером. Хорошо растет на восточных и западных окнах. Эхмеи с толстыми жесткими листьями (эхмея полосатая, эхмея прицветниковая и др.) могут хорошо расти и на южных окнах, где притенение может потребоваться только в самые жаркие часы дня.
Полив: Почва должна быть все время в слегка влажном состоянии. Весной и летом розетку наполняют мягкой водой.
Удобрения: Подкормки удобрением проводят весной и летом. Для подкормок применяют специальные удобрения для бромелиевых. Можно использовать удобрения для других цветущих комнатных растений в половинной дозе. Подкормки проводят через 2 недели.
Влажность воздуха: Эхмея предпочитает довольно влажный воздух, примерно около 60% влажности. Поэтому растение полезно регулярно опрыскивать теплой мягкой водой из очень мелкого распылителя.
Пересадка: Ежегодно после цветения в почву, состоящую из 1 части легкой дерновой земли, 1 части торфяной, 1 части листовой и 1 части перегнойной, с примесью песка. Можно использовать покупную почвенную смесь для бромелиевых. Емкость для посадки не должна быть слишком глубокой.
Размножение: Семенами и дочерними побегами, когда они уже достаточно сформированы, т.е. имеют длину около 13-15 см. Полученные молодые растения зацветают, как правило, через год - два. Растения, выращенные из семян, зацветают обычно через 3-4 года. В этом случае пересаживают эхмеи раз в два года.

 Эхмея зацветает через 4 года после прорастания семян, а то и на пятый год. Но так как накладно содержать растение столько лет, то разводчики цветов применяют газ этилен с целью быстрого приведения цветка в товарный вид. Так как этилен является газом, который ускоряет старение растения, то  при применение этого газа  растение достигает периода цветения всего за  три года. Это очень выгодно с точки зрения коммерции. Все эти процессы протекают в специальных помещениях, куда ночью подается этот газ. Но обычный  цветовод – любитель этого в домашних условиях сделать не может, поэтому они нашли более простой и менее трудоемкий способ обработки растений этиленом. Многие опытные цветоводы  знают, что при разложении плодов яблони, а точнее яблок, и кожуры бананов происходит выделение газа этилена. Вот именно это явление они и используют для того, чтобы обработать растение газом. Вот и я решил провести такой эксперимент с использованием этилена, который выделился при разложении яблок.

 На первом этапе я обильно полил растения. Их я взял два, так как вероятность зацветания становится больше. Далее я поместил эти два цветка в полиэтиленовый пакет. Положил в пакет еще главные источники этилена: яблоки сорта Башкирская красавица. Но сорт яблок не на что не влияет, но влияет их размер и количество. Количество яблок было равно 6. Количества выделившего этилена в результате гниения этих шести яблок должно было хватить, так как его необходимо не очень большое количество. Потом я завязал пакет, чтобы газ не выходил, так как его относительная молярная масса меньше относительной молярной массы воздуха и равна 28 грамм/моль, а у воздуха она равна 29грамм/моль.

  Второй этап. Эхмея полосатая любит солнечный свет то, мне пришлось переставить его с южного окна на восточное и в комнату с меньшей температурой. Так как при этом уменьшилась интенсивность испарения воды, которая у растения была в ограниченном количестве.

И так Эхмея полосатая простояла в этой комната две недели без всяких изменений и манипуляций над ней.

 Третий этап. Яблоки сгнили от высокой влажности и бактерий. Пришло время заменить их на новые, потому что весь этилен уже из них выделился. Так пришлось положить взамен тех старых шести новые шесть яблок. Еще эти два растения были политы.

  Прошло еще полторы недели. Пришло время вызволять растение из «полиэтиленового плена».

 Четвертый этап. Растение было извлечено из пакета. Полито и поставлено на привычное и благоприятное для него место на южное окно.

Пошел обычный ритм жизни данного растения.

Через две недели мною было замечено то, что в воронке, где находится вода появляется стрелка. Эта стрелка растет в высоту и в ширину. Вершина этой стрелки образованна бутоном, который еще закрыт окололистиками. Сначала этот бутон находился в воде, так как в воронку данного цветка нужно наливать воду. И когда он рос, то из отверстия в вершине бутона выходил какой-то газ. Как мне кажется, это был кислород, так как стрелка была зеленого цвета, а соответственно происходил фотосинтез. После того, как стрелка перестала расти, она стала менять зеленый цвет на розовый. Затем бутон стал распускаться. Открылось соцветие. Цветки были розово-красные и после того, как цветки отцветали, они становились фиолетовыми. Соцветие цвело пять месяцев. После того, как оно отцвело, растение дало побеги, которые появляются один раз после цветения. А после этого оно умирает. И следствием моего опыта стала раннее старение и гибель растения, что я и хотел доказать. Мой опыт был завершен.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Почти за 100 лет, прошедших с момента откры­тия действия этилена на растения, исследования в этой области прошли через несколько пиков. Пер­вый был связан с выяснением всей полноты эффек­тов этилена на растения и с его практическим при­менением в сельском хозяйстве. Второй определился успехами в области изучения биосин­теза этилена в самом растении и выяснении роли этого процесса в ответе растений на внешние воз­действия. Третий проходит в наши дни. Он связан с изучением генетики и молекулярной биологии вос­приятия и передачи гормонального сигнала в расте­ниях. Этот этап обещает дать в руки исследователей принципиально новые пути управления жизнью растений через получение генно-инженерным путем транс формантов с заданными параметрами роста, плодоношения и скорости созревания плодов.

Список литературы

1)     Кулаева О.Н Как регулируется жизнь растений // Соросовский Образовательный Журнал. 1995. NQ 1. С. 20-27.

2)     Полевой В.В. Фитогормоны. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. 249 с.

3)     Eeker J.R. The Ethylene Siglla1 Transdиction Pathway in Plallts // Sciellce. 1995. Уо1. 268. Р. 667-675.

4)     Вleeeka А.В., Sehaller G. Е. The Mecharusm of Ethy1elle Perception // Plallt Physiol. 1996. Уоl. 111. Р. 653-660.

5)     Ресурсы Интернета